Growth and physiological characteristics of the weed false johnsongrass (Sorghum arundinaceum (Desv.) Stapf)
Palavras-chave:
sorgo, planta daninha, taxa de crescimentoResumo
Sorghum arundinaceum (Desv.) Stapf a weed that belongs to the Poaceae family and is widespread throughoutBrazil. Despite the frequent occurrence, infesting cultivated areas, there is little research concerning the biology and
physiology of this species. The objective of this research was to evaluate the growth, carbon partitioning and
physiological characteristics of the weed Sorghum arundinaceum in greenhouse. Plants were collected at regular
intervals of seven days, from 22 to 113 days after transplanting (DAT). In each sample, we determined plant height, root
volume, leaf area and dry matter, and subsequently we performed the growth analysis. We have determined the dry
matter partitioning among organs, the accumulation of dry matter, the specific leaf area, the relative growth rate and leaf
weight ratio. At 36, 78 and 113 DAT, the photosynthetic and transpiration rates, stomatal conductance, CO2 concentration
and chlorophyll fluorescence were evaluated. The Sorghum arundinaceum reached 1.91 m in height, with slow initial
growth and allocated much of the biomass in the roots. The photosynthetic rate and the maximum quantum yield of
FSII are similar throughout the growth cycle. At maturity the Sorghum arundinaceum presents higher values of
transpiration rate, stomatal conductance and non-photochemical quenching coefficient (NPQ).
Referências
Aguilera DB, Ferreira FA & Cecon PR (2004) Crescimento de Siegesbeckia orientalis sob diferentes condições de luminosidade. Planta Daninha, 22: 43-51.
Aumonde TZ; Pedó T, Martinazzo EG, Moraes, DM, Villela FA & Lopes NF (2013) Análise de crescimento e partição de assimilados em plantas de maria-pretinha submetidas a níveis de sombreamento. Planta Daninha, 31: 99-108.
Benincasa MMP (2003) Análise de crescimento de plantas, noções básicas. 2ª. ed. Jaboticabal: FUNEP. 41 p.
Bianco S, Tonhão MAR & Pitelli RA (2005) Crescimento e nutrição mineral de capim-braquiária. Planta Daninha, 23:423-428.
Bilger W, Schereiber U & Bock M (1995) Determination of the quantum efficiency of photosystem II and of non-photochemical quenching of chlorophyll fluorescence. Oecologia, 102:425-432.
Bolhàr-Nordenkampf HR, Long SP & Baker NR (1989) Chlorophyll fluorescence as probe of the photosynthetic competence of leaves in the field: a review of current instrument. Functional Ecology, 3:497-514.
Brasil (2009) Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Regras para análise de sementes. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Secretaria de Defesa Agropecuária. Brasília, 395p.
Brodribb TJ & Holbrook NM (2003) Stomatal closure during leaf dehydration, correlation with other leaf physiological traits. Plant Physiology, 132:2166-2173.
Carvalho CM, Lacerda CF, Vieira MR, Rodrigues CF, Américo JG & Neves ALR (2009) Comportamento ecofisiológico das culturas de milho e feijão-de-corda sob diferentes condições de cultivo. Pesquisa Aplicada e Agrotecnologia, 2:78-83.
Carvalho SJC, Moreira MS, Nicolai, M, Ovejero RML, Christoffoleti PJ & Medeiros D (2005a) Crescimento e desenvolvimento da planta daninha capim-camalote. Bragantia, 64:591-600.
Carvalho SJP, Pereira Silva RF, López-Ovejero RF, Nicolai M & Christoffoleti PJ (2005b) Crescimento, desenvolvimento e produção de sementes da planta daninha capim-branco (Chlorispolydactyla). Planta Daninha, 23:603-609.
Castro GSA, Crusciol CAC, Negrisoli E & Perim L (2011) Sistemas de produção de grãos e incidência de plantas daninhas. Planta Daninha, 29:1001-1010.
Christoffoleti PJ (2001) Análise comparativa do crescimento de biótipos de picão-preto (Bidens pilosa) resistente e susceptível aos herbicidas inibidores de ALS. Planta Daninha, 19:75-84.
Falqueto AR, Cassol D, Magalhães Júnior AM, Oliveira AC & Bacarin MA (2009) Physiological analysis of leaf senescence of two rice cultivars with different yield potential. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, 44:695-700.
Ferreira EA, Aspiazú I, Galon L, Concenço G, Silva AF & Reis LAC (2011) Características fisiológicas da soja em relação a espécies de plantas daninhas. Revista Trópica – Ciências Agrárias e Biológicas, 5:39-47.
Gonçalves ER, Ferreira VM, Silva JV, Endres L, Barbosa TP & DUARTE WG (2010) Trocas gasosas e fluorescência da clorofila a em variedades de cana-de-açúcar submetidas à deficiência hídrica. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, 14:378–386.
Grieu P, Lucero DW, Ardiani R & Ehleringer JR (2001) The mean depth of soil water uptake by two temperate grassland species over time subjected to mild soil water deficit and competitive association. Plant and Soil, 230:197-209.
Hoagland DR & Arnon DJ (1950) The water culture method of growing plants without soil. Berkeley: University of California. 31p. (Boletim técnico, 347).
Lorenzi H (2008) Plantas daninhas do Brasil: terrestres, aquáticas, parasitas e tóxicas. 4ª ed. Nova Odessa, Instituto Plantarum. 384p.
Lu C, Wang B & Zhang J (2003) Salinity treatment shows no effects on photosystem II photochemistry, but increases the resistance of photosystem II to heat stress in halophyte Suaeda salsa. Journal of Experimental Botany, 54:851-860.
Machado AFL, Ferreira LR, Ferreira FA, Fialho CMT, Tuffi Santos LD & Machado MS (2006) Análise de crescimento de Digitaria insularis. Planta Daninha, 24:641-647.
Magalhães PC, Souza TC, Albuquerque PEP, Karam D, Magalhães MM & Cantão FRO (2009) Caracterização ecofisiológica de linhagens de milho submetidas a baixa disponibilidade hídrica durante o florescimento. Revista Brasileira de Milho e Sorgo, 8:223-232.
Myers CV & Anderson RC (2003) Seasonal variation in photosynthetic rates influences success of an invasive plant, garlic mustard (Alliaria petiolata). America Midland Naturalist, 150:231-245.
Pedrinho Junior AAF, Bianco S & Pitelli, RA (2004) Acúmulo de massa seca e macronutrientes por plantas de Glycine Max e Richardia brasiliensis. Planta Daninha, 22:53-61.
Rascher U, Liebig M & Lüttge U (2000) Evaluation of instant lightresponse curves of chlorophyll fluorescence parameters obtained with a portable chlorophyll fluorometer on site in the field. Plant Cell Environ, 23:1397-1405.
Rezende BMP, Tavares CJ, Marangoni RE, Cunha PCR & Jakelaitis A (2012) Efeito do fomesafen + fluazifop-p-butil associados com inseticidas no controle das plantas daninhas na cultura da soja. Agrária, 7:608-613.
Sangoi L, Schmitt A & Zanin CG (2007) Área foliar e rendimento de grãos de híbridos de milho em diferentes populações de plantas. Revista Brasileira de Milho e Sorgo, 6:263-271.
Silva LC, Beltrão EM &. Amorim Neto MS (2000). Análise de crescimento de comunidades vegetais. Campina Grande. 47 p. (Boletim técnico, 34).
Silva AA, Jakelaitis A & Ferreira LR (2004) Manejo de plantas daninhas no sistema integrado agricultura-pecuária. In: Zambolim L, Silva AA & Agnes EL Manejo integrado: integração lavoura-pecuária. Viçosa, 117-170.
Silva MMP, Vasquez HM, Smith RB, Silva JFC, Erbesdobler EDA & Júnior PSCA (2006) Eficiência fotoquímica de gramíneas forrageiras tropicais submetidas à deficiência hídrica. Revista Brasileira de Zootecnia, 35:67-74.
Taiz L & Zeiger E (2013) Fisiologia Vegetal. 5ª ed. Porto Alegre, Artmed. 918p.
Tavares CJ, Jakelaitis A, Rezende BMP & Cunha PCR (2013) Fitossociologia de plantas daninhas na cultura do feijão. Agrária, 8:27-32.
Van Kooten O & Snel JFH (1990) The use of chlorophyll fluorescence nomenclature in plant stress physiology. Photosynthesis Research, 25:147-150.
Zanine AM & Santos EM (2004) Competição entre espécies de plantas – uma revisão. Revista da FZVA, 11:10-30.
