Indução, análises morfológicas e ultraestruturais de calos de maracujazeiro nativo
Palavras-chave:
calogênese, ácido 2, 4-diclorofenoxiacético, picloram, Passiflora gibertii.Resumo
A análise de calos que apresentem características embriogênicas é importante para posterior regeneração, invitro, de espécies com características agronômicas desejáveis, como o maracujazeiro nativo Passiflora gibertii.
Diante do exposto, objetivou-se, com este trabalho, analisar a indução de calos oriundos de explantes foliares de
Passiflora gibertii N. E. Brown, bem como caracterizá-los, morfológica e ultraestruturalmente. Para obtenção de
calos, folhas cotiledonares foram inoculadas, em meio de cultura, suplementado com picloram e 2,4-D, combinados
com cinetina. Após 30 dias em meio de cultura, no escuro, os calos obtidos foram preparados para a visualização
em microscopia eletrônica (transmissão e varredura) e microscopia de luz. Os resultados permitem afirmar que a
adição de picloram e cinetina ao meio de cultura promove maior formação de calos em explantes foliares de P.
gibertii que 2,4-D e cinetina. O regulador 2,4-D proporciona a obtenção de calos com células de formato
isodiamétrico, pequenas e com pequeno espaço intercelular, sistema celular organizado e predominância de
mitocôndrias de formato arredondado.
Já com a utilização do regulador de crescimento picloram, observa-se a predominância de células grandes e de
formato alongado, de espaços intercelulares, de sistema celular desorganizado e de mitocôndrias de formato alongado.
Referências
Aguiar AVM, Silva RM, Cardoso EA, Maracajá PB & Pires, H (2010) Utilização de espécies de Passiflora spp. como porta-enxertos no controle de doenças do maracujazeiro. Agropecuária Científica no Semi-Árido, 6:17-22.
Appezzato-da-Glória B & Machado, SR (2004) Ultrastructural analysis of in vitro direct and indirect organogenesis. Revista Brasileira de Botânica, 27:429-437.
Canhoto JM, Mesquita JF & Cruz GS (1996) Ultrastructural changes in cotyledons of pineapple guava (Myrtaceae) during somatic embryogenesis. Annals of Botany, 78:513-521.
Cunha MAP, Barbosa, LV & Junqueira NTV (2002) Espécies de maracujazeiro. In: Lima AA (Ed.) Maracujá produção: Aspectos técnicos. Brasília: Embrapa Informação Tecnológica. p.15-24.
Dornelas MC, Vieira MLC & Appezzato-da-Glória B (1992) Histological analysis of organogenesis and somatic embryogenesis induced in immature tissues of Stylosanthes scabra. Annals of Botany, 70:477-482.
Figueiredo SFL, Simões C, Albarello N & Viana VRC (2000) Rollinia mucosa cell suspension cultures: establishment and growth conditions. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 63:85-92.
Garcia R, Pacheco G, Falcão E, Borges G & Mansur E (2011) Influence of type of explant, plant growth regulators, salt composition of basal medium, and light on callogenesis and regeneration in Passiflora suberosa L. (Passifloraceae). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 106:47-54.
Monteiro-Hara ACBA (2000) Cultivo in vitro de três espécies do gênero Passiflora. Dissertação de Mestrado. Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Piracicaba. 82 p.
Moura TL, Almeida WAB, Mendes BMJ & Filho FAAM (2001) Organogênese in vitro de Citrus em função de concentrações de BAP e seccionamento do explante. Revista Brasileira de Fruticultura, 23:240-245.
Murashige T &Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15:473-497.
Nuti Ronchi V & Giorgetti L (1995) Basic and fundamental aspects of somatic embryogenesis – The cell’s commitment to somatic embryogenesis. In: Bajaj YPS (Ed.) Biotechnology in Agriculture and Forestry 30: Somatic embryogenesis and synthetic seed, I. Berlin: Springer-Verlag. p.3-19.
Pacheco G, Garcia R, Lugato D, Vianna M & Mansur E (2012) Plant regeneration, callus induction and establishment of cell suspension cultures of Passiflora alata Curtis. Scientia Horticulturae, 144:42-47.
Pêgo RG, Paiva PDO & Paiva R (2013) Micropropagation of Syngonanthus elegantulus. Ciência e Agrotecnologia, 37:32-39.
Pinto DLP, Almeida AMR, Rêgo MM, Silva ML, Oliveira EJ & Otoni WC (2011) Somatic embryogenesis from mature zygotic embryos of commercial passionfruit (Passiflora edulis Sims) genotypes. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 107:521-530.
Pinto DLP, Barros BA, Viccini LF, Campos JMS, Silva ML & Otoni WC (2010) Ploidy stability of somatic embryogenesis-derived Passiflora cincinnata Mast. plants as assessed by flow cytometry. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 103:71-79.
Rasool SN, Jaheerunnisa S, Jayaveera KN & Suresh Kumar C (2011) In vitro callus induction and in vivo antioxidant activity of Passiflora foetida L. leaves. International Journal of Applied Research in Natural Products, 4:1-10.
Reis, LB, Silva ML, Lima ABP, Oliveira MLP, Pinto DLP, Lani ERG & Otoni WC (2007) Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of passionfruit species: Passiflora cincinnata and P. edulis f. flavicarpa. Acta Horticulturae, 738:425-431.
Rosa YBCJ & Dornelas MC (2012) In vitro plant regeneration and de novo differentiation of secretory trichomes in Passiflora foetida L. (Passifloraceae). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 108:91-99.
Santana JRF, Paiva R, Souza AV & Oliveira LM (2011) Effect of different carbon sources on the in vitro multiplication of Annona sp. Ciência e Agrotecnologia, 35:487-493.
Santos FC, Ramos JD, Pasqual M, Rezende JC, Santos FC & Villa F (2010) Micropropagação do maracujazeiro-do-sono. Revista Ceres, 57:112-117.
Silva ML, Pinto DLP, Guerra MP, Floh EIS, Bruckner CH & Otoni WC (2009) A novel regeneration system for a wild passion fruit species (Passiflora cincinnata Mast.) based on somatic embryogenesis from mature zygotic embryos. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 99:47-54.
Silvia MC, Vieira MLC, Mondin M & Aguiar-Perecin MLR (2005) Comparative karyotype analysis of three Passiflora L. species and cytogenetic characterization of somatic hybrids. Caryologia, 58:220-228.
Soares WS, Rêgo MM, Rêgo ER, Barroso PA, Nascimento KS & Ferreira KT (2012) Estabelecimento in vitro e micropropagação de maracujá silvestre ( Passiflora foetida L.). Revista Brasileira de Plantas Medicinais, 14:138-142.
Stella A, Braga MR (2002) Calluses and cell suspension cultures of Rudgea jasminoides, a tropical woody Rubiaceae. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 68:271-276.